Herramientas para el manejo de parásitos internos en pequeños rumiantes: selección de animales

Por Linda Coffey, Especialista en Agricultura de NCAT

Resumen

Para la salud animal a largo plazo, mejorar la resistencia de ovejas y cabras a los parásitos internos es una estrategia muy importante. La cría de animales puede construir un rebaño o manada más fuerte y resistente si los productores identifican y seleccionan los mejores animales para la salud a largo plazo. Esta publicación discute los métodos y la justificación para seleccionar ovejas y cabras con mayor resistencia o resiliencia a los parásitos internos. También describe brevemente otras herramientas de gestión útiles para los productores y para los pequeños rumiantes criados en zonas húmedas.

Contenido

Introducción
Selección de animales
Razas
Medición de la resistencia o resiliencia
Cómo utilizar esta información
Estímulo
Resumen
Evaluación interna de la gestión de parásitos
Referencias
Más recursos

Introducción

Los parásitos internos son un problema de salud importante para ovejas y cabras criadas en áreas húmedas, especialmente donde la tierra es limitada. Durante años, los antihelmínticos han mitigado los efectos de estos parásitos y han permitido a los agricultores y ganaderos mantener la productividad y la salud de su ganado. Sin embargo, los parásitos internos han desarrollado resistencia a los antihelmínticos (desparasitantes). El productor de ovejas o cabras de hoy debe usar todas las herramientas disponibles para ayudar a controlar los parásitos internos.

Los parásitos maduros se reproducen dentro del huésped y “ponen huevos”, que pasan a través del huésped y se derraman en las heces. Después de que los huevos salen del huésped, eclosionan en larvas. Las condiciones cálidas y húmedas fomentan la eclosión de los huevos y el desarrollo en larvas infecciosas. Las larvas necesitan humedad, como rocío o lluvia, para romper el gránulo fecal y moverse. Migran fuera de las heces y viajan por las briznas de hierba. Cuando un animal (oveja o cabra) pasta, puede tomar larvas de parásitos junto con la hoja de hierba. El número de parásitos aumenta con el tiempo cuando las condiciones son favorables (cálidas, húmedas). Las larvas maduran dentro del huésped, y el ciclo continúa.

Los parásitos adultos afectan a su huésped de varias maneras. Pueden dañar el revestimiento del estómago o los intestinos, lo que puede provocar pérdida de peso y anemia, junto con síntomas relacionados como debilidad, mandíbula de botella y anorexia (pérdida de apetito). Haemonchus contortus (gusanos barberpole) interrumpen y dañan el revestimiento del estómago y se alimentan de sangre, lo que puede provocar anemia. Otros gusanos y coccidios causan daños en el revestimiento intestinal, lo que puede resultar en una absorción reducida de nutrientes y provocar diarrea y pérdida de peso o aumento de peso deficiente.

Esta publicación se ocupa de la resistencia a la reproducción de nematodos gastrointestinales (gusanos redondos). Los coccidios se mencionan de pasada, ya que son parásitos internos importantes en corderos y cabritos, y los productores deben estar atentos a la posibilidad de coccidios y obtener un buen diagnóstico para que se puedan usar tratamientos efectivos.

Cuando el número de parásitos adultos dentro del animal huésped alcanza un nivel que causa una enfermedad obvia, los productores han confiado históricamente en los antihelmínticos (desparasitantes) para matar a los parásitos y permitir que el animal se cure y se recupere. Sin embargo, a medida que el animal pasta, puede estar ingiriendo continuamente más larvas de parásitos, dando a una nueva “cosecha” de parásitos un hogar dentro del animal. La presencia de larvas de parásitos en el medio ambiente a menudo se conoce como un “desafío”, y los animales que pueden desempeñarse bien a pesar del desafío son resilientes (tolerantes) o resistentes a los parásitos internos. La selección de animales que sean resistentes reducirá el desafío en la granja con el tiempo. La selección de animales que son resistentes puede no afectar el número de larvas de parásitos en el medio ambiente, pero dará como resultado una mejor supervivencia y producción animal frente a un desafío.

¿Hay algún problema?
Los signos de infección parasitaria interna comúnmente incluyen algunos o todos los siguientes. Tenga en cuenta que algunos signos también pueden ser causados por otras afecciones).

• Crecimiento deficiente o reducción de la producción de leche
• Pérdida de la condición corporal (el animal se vuelve más delgado a pesar de una buena nutrición)
• Pelaje áspero o vellón pobre
• Lavado (diarrea: heces húmedas en lugar de granuladas; no se ve con todos los parásitos)
• Vigor reducido (los animales parecen letárgicos y se quedan atrás del rebaño o manada)
• Disminución del apetito
• Anemia (observada en las membranas mucosas pálidas; causada por parásitos chupadores de sangre, como Haemonchus contortus)
• Mandíbula de botella
• Muerte súbita después de un estrés (por ejemplo, un animal es perseguido en un día caluroso y húmedo)

Debido a que los parásitos internos son tan adaptables, difíciles de controlar y perjudiciales para la salud animal, es importante que los productores utilicen todas las herramientas disponibles para proteger su ganado y mantener bajo control las poblaciones internas de parásitos.

¿Qué puedes hacer?

Las estrategias o herramientas que se pueden emplear para combatir la infección interna del parásito incluyen:

• Buena nutrición para apoyar el sistema inmunológico
• Desparasitación selectiva basada en FAMACHA© u otros criterios
• Manejo de pastizales
• Métodos de control alternativos (por ejemplo, productos botánicos, partículas de alambre de óxido de cobre)
• Selección de animales resistentes

Para obtener más información sobre estas estrategias, consulte la publicación de ATTRA Managing Internal Parasites in Sheep and Goats.

El resto de esta publicación explora varios aspectos de la selección de animales para la resistencia interna de parásitos.

Selección de animales

La resistencia a los parásitos internos significa que un animal expuesto a parásitos internos suprime el establecimiento de parásitos dentro del cuerpo, o suprime la fecundidad (puesta de huevos) de los gusanos si se establecen. El desprendimiento de huevos de parásitos será mínimo en un animal resistente, por lo que un animal resistente beneficiará a todo el rebaño al reducir la contaminación de la granja.

La investigación ha demostrado que los parásitos internos no se distribuyen uniformemente en una manada o bandada. A menudo, el 80% de los parásitos internos estarán en el 20% de los animales. Esto se conoce como la “regla 80/20”. Si puede identificar a los animales que albergan la mayoría de los parásitos y eliminarlos de su rebaño, puede reducir significativamente la contaminación de los pastos. Además, debido a que la resistencia es hereditaria, la cría de aquellos animales que son más resistentes dará como resultado un rebaño más fuerte con el tiempo. Por ejemplo, un estudio encontró que las ovejas merinas que fueron seleccionadas por resistencia tenían recuentos de huevos fecales (FEC) reducidos en un 69%. Además, el FEC en ovejas seleccionadas no tratadas fue menor que el FEC en ovejas no seleccionadas empapadas estratégicamente; en otras palabras, el efecto de la reproducción fue mayor que el efecto del tratamiento estratégico (Eady et al., 2003). En un estudio australiano, las ovejas merinas seleccionadas por una mayor resistencia a H. contortus tuvieron recuentos de huevos significativamente más bajos en todo momento antes y durante el período periparto, en comparación con las ovejas seleccionadas por susceptibilidad (Woolaston, 1992). Se cree que la heredabilidad en cabras es menor y la resistencia se expresa más tarde (a edades más avanzadas), pero la selección de resistencia sigue siendo factible y dará como resultado una menor contaminación de los pastos con el tiempo (Vagenas et al., 2002).

Otra posibilidad si hay espacio; Madre e hija pastando (cabras).

La resistencia se mide tomando muestras fecales y haciendo recuentos cuantitativos de huevos fecales en animales que no han sido desparasitados en al menos seis semanas (preferiblemente todos los animales tratados o no tratados de manera similar). Los animales que arrojan menos huevos son identificados y retenidos para la reproducción, mientras que los animales que arrojan la mayor cantidad de huevos serían identificados y luego sacrificados. Los carneros y los machos proporcionan la mitad del material genético para el cultivo de corderos y cabritos, por lo que elegir un padre más resistente tendría un gran impacto en la resistencia de los parásitos y el nivel de contaminación en la granja en los próximos años.

El problema con la selección de resistencia es que a veces los rasgos de producción se correlacionan negativamente con la resistencia (Bisset, 1996; Hoste y Chartier, 1993). Debido a que el estrés afecta el sistema inmunológico y hace que un animal sea más susceptible a los parásitos internos, los productores pueden observar que una coneja que produce la mayor cantidad de leche (causando un estrés nutricional o metabólico) también tiene la mayor cantidad de problemas con los parásitos. Además, los corderos criados como gemelos generalmente tienen un mayor recuento de huevos fecales que los criados como solteros (Wolf et al., 2008). Los productores tendrán que equilibrar los factores de resistencia interna observada al parásito y los rasgos de producción y considerar todo el sistema agrícola (Torres-Acosta y Hoste, 2008).

Razas

Debido a la variabilidad mencionada anteriormente y la heredabilidad, es posible progresar dentro de una raza centrándose en la resistencia a los parásitos internos como un rasgo de selección. Los criadores de Katahdin están trabajando en esto ahora.

Además, hay algunas razas que han sido seleccionadas naturalmente por su resistencia a los parásitos internos. Estas razas generalmente se desarrollaban en situaciones y climas que favorecían a los parásitos internos. Los animales fueron seleccionados por “supervivencia del más apto”, y serán significativamente más resistentes en promedio que otras razas que no fueron criadas en esas condiciones. Una nota de precaución está en orden: estas razas resistentes seguirán teniendo variabilidad dentro de sus filas, y cada animal tendrá que ser evaluado por sus méritos. En una prueba de buck basada en pastos en Oklahoma en 2008, el mejor buck y el peor buck para la resistencia interna del parásito eran de la misma raza.

Es posible tener problemas de parásitos a pesar de que se sabe que la raza es resistente, y esa resistencia se puede perder cuando los animales ya no están sujetos a la misma presión de selección que estaba presente cuando se estaba desarrollando la raza. Cuando un productor deja de prestar atención a la resistencia interna del parásito y selecciona animales sin tener en cuenta ese rasgo, los animales más débiles pueden ser retenidos para la reproducción.

Aún así, es útil saber qué razas han mostrado resistencia a los parásitos. La incorporación de una de esas razas puede tener un impacto casi inmediato en los problemas internos de parásitos y tendrá beneficios a largo plazo. Una vez más, los objetivos de la granja y los rasgos de producción de importancia deben tenerse en cuenta. Además, cuando se usa una raza resistente para el cruce, habrá mucha variabilidad en la generación F1 y F2. (El cruce de dos razas da como resultado la generación F1; cruzar las ovejas F1 con carneros F1 produce la generación F2). Véase, por ejemplo, el trabajo de J. E. Miller, quien experimentó con ovejas Suffolk (susceptibles) y nativas de la Costa del Golfo (resistentes) (Miller et al., 2006). Durante ese experimento, encontró en un período de infección FEC en las ovejas F2 que oscilaban entre 167 y 149,933 huevos por gramo.

En general, se cree que las razas con cierta influencia tropical son más resistentes a los parásitos internos. Por ejemplo, se demostró que las ovejas de Hampshire eran menos resistentes que las ovejas de St. Croix, Katahdin y Dorper (Burke y Miller, 2002). Además, los corderos Dorper eran menos resistentes que los corderos Katahdin, que eran menos resistentes que los corderos de St. Croix (Burke y Miller, 2004). Katahdin era más resistente que las razas Dorper y Dorset (Vanimisetti et al., 2004). Gulf Coast Native, Florida Native, St. Croix y Barbados Blackbelly son ovejas que fueron seleccionadas en áreas tropicales, y se ha demostrado que son más resistentes que Rambouillet; Hampshire; Finn-Dorset x Rambouillet; Suffolk; y Dorset x Rambouillet (resumido en Amarante y Amarante, 2003).

Algunos animales no son resistentes a los parásitos, pero son capaces de producir bien y permanecer sanos a pesar de la exposición interna al parásito. Estos animales se denominan “resistentes” o “tolerantes”. Hay ventajas obvias para los animales resistentes porque pueden requerir menos tratamientos y pueden seguir siendo productivos bajo desafío. La desventaja es que los animales resistentes pueden estar esparciendo una gran cantidad de huevos de parásitos internos en su estiércol, contaminando así la granja y causando problemas de salud para otros animales (no resistentes y no resistentes).

Puede ser difícil ver la diferencia entre resistencia y resiliencia, a menos que haga recuentos de huevos fecales para tener una idea de la población de gusanos dentro del animal y el desafío general en el rebaño. Un animal resistente, como uno resistente, debe parecer sano y vigoroso. Si H. contortus (un chupasangre ) es el principal problema, entonces tanto los animales resistentes como los resistentes no serán anémicos, mientras que los animales susceptibles con suficiente desafío mostrarán enfermedades, incluidas las membranas pálidas.

Además, en las granjas donde no hay mucho desafío (no hay muchas larvas de parásitos presentes en el medio ambiente), todos los animales pueden parecer resistentes o resistentes. Los primeros años de tener pequeños rumiantes en una granja a menudo están libres de problemas (con respecto a la infección interna del parásito), adormeciendo al productor en una falsa sensación de seguridad. Desafortunadamente, cuando hay suficiente desafío para identificar a los animales resistentes o resistentes, habrá animales susceptibles que sufran enfermedades y necesiten tratamiento antiparasitario.

La buena noticia es que la selección de animales para la resistencia a los parásitos internos parece ser sostenible. Después de seleccionar líneas ovinas durante 10 años para FEC alto o bajo cuando se expusieron a H. contortus, los investigadores desafiaron a las ovejas con H. contortus y Trichostrongylus colubriformis. Los parásitos no se adaptaron a los animales resistentes, como pueden hacerlo a los medicamentos (Kemper et al., 2009). Además, como se muestra en esta investigación y en otras, la selección de animales para la resistencia a una especie de parásito también ayuda a conferir resistencia a otra (Gruner et al., 2004; Hoste y Chartier, 1998; Sreter y otros, 1994; Gauly y Erhardt, 2001; Green y otros, 1999; Wolf et al., 2008).

Medición de la resistencia o resiliencia

La medición del recuento de huevos fecales es la forma más precisa de identificar a los animales con resistencia interna al parásito dentro de un rebaño o manada. El sistema inmunológico de los animales resistentes no permitirá que las larvas se establezcan y se conviertan en adultos maduros que ponen huevos, o suprimirán la capacidad de puesta de huevos de los adultos que sí se establecen. Por lo tanto, los animales resistentes no arrojarán tantos huevos en sus heces como los animales no resistentes expuestos de manera similar.

Sin embargo, hay muchos factores que afectan el recuento de huevos fecales además de la susceptibilidad del animal. Estos incluyen el nivel de exposición (desafío), la etapa de producción de los animales (los animales jóvenes o lactantes pueden arrojar más huevos) y el tipo de forraje que se pastorea (el consumo de forraje con alto contenido de taninos como sericea lespedeza hace que los recuentos de huevos fecales disminuyan drásticamente). Se ha demostrado que la suplementación o proporcionar una mejor nutrición reduce la FEC (Kahn et al., 2003; Eady et al., 2003) y reducir la anemia (Burke et al., 2004). Además, los parásitos mismos representan alguna variación. Algunos parásitos (como Haemonchus contortus) son muy prolíficos y producen muchos huevos. Otras especies no pueden; Para ellos, un recuento más bajo de huevos aún puede significar una infección interna grave del parásito. Además, los parásitos internos no ponen huevos continuamente y, por lo tanto, los huevos no se distribuyen uniformemente en las heces. Si toma muestras de un animal dos veces, encontrará alguna variación en el recuento de huevos fecales incluso el mismo día. Y el número de gusanos adultos dentro del animal puede no estar bien correlacionado con el recuento de huevos fecales (Saddiqi et al., 2010); Los adultos inmaduros y los gusanos mayores producen menos y los machos no producen ninguno.

Con todo esto en mente, está claro que los recuentos de huevos fecales no son una herramienta perfecta. Sin embargo, la información obtenida es muy útil y hacer recuentos fecales de huevos es la mejor manera de evaluar el desafío en el rebaño o manada y encontrar aquellos animales que albergan menos parásitos internos (Gray, 1998). Las decisiones de reproducción pueden basarse en una o dos muestras si los recuentos de huevos fecales se realizan durante un momento de alto desafío, como en el destete o el postdestete temprano para los corderos, y durante la lactancia para las ovejas. Durante esos tiempos, los animales que son resistentes se destacarán, y este es el momento en que la heredabilidad es mayor (Gauly y Erhardt, 2001). Hacer más de una muestra mejora la evaluación de la heredabilidad, pero esto debe equilibrarse con el costo.

Muchos productores hacen sus propios recuentos de huevos fecales. El proceso es bastante simple, y puede ser costoso tener un veterinario que procese muestras. Además, no todos los veterinarios reportan resultados cuantitativos. Hay talleres donde se enseña el procedimiento, y también hay instrucciones disponibles en línea. Consulte la sección Recursos para encontrar vínculos a tutoriales.

El Centro Nacional de Mejoramiento de Ovejas (NSIP) calcula los valores genéticos estimados (EBV) para los productores de ovejas y las asociaciones de razas. El EBV se basa en el rendimiento de la progenie y evalúa el mérito genético de un animal para un rasgo particular. La raza Katahdin es actualmente la única raza estadounidense que tiene EBV para la resistencia de parásitos, utilizando recuentos de huevos fecales de corderos al destete y al destete temprano después del destete. Las razas australianas han estado calculando EBV para la resistencia de los parásitos durante mucho más tiempo.

Para mejorar un rebaño o parvada, los productores querrán considerar la resistencia o resiliencia interna de los parásitos junto con otros objetivos, como el crecimiento, la reproducción, la producción de leche y la salud en general. Además, el uso de datos como los recuentos de huevos fecales requiere la consideración de todos los factores que influyen en los recuentos de huevos fecales. No sería justo comparar el recuento de huevos fecales de una oveja seca de cuatro años con la de un cordero gemelo de cuatro meses o la de una oveja de un año criando gemelos. Un solo cordero que ha tenido acceso a un excelente pasto y alimento de fluencia tendrá una ventaja sobre uno que ha sido un trillizo lactante en el pasto promedio. Asegúrese de comparar “manzanas con manzanas” cuando use los datos de conteo de huevos fecales para seleccionar animales para la reproducción.

Factores que afectan el recuento de huevos fecales

• Nivel de desafío larvario afectado por:
  • Manejo de pastizales
  • Tiempo
  • Tasa de carga ganadera (densidad animal)
• Composición de especies (tipos de gusanos)
• Carga de lombrices
• Respuesta inmune del animal (que afecta el establecimiento del gusano y la fecundidad adulta) afectada por:
  • Genética
  • Edad
  • Etapa de producción
  • Estrés (incluido el nutricional)
• Factores dietéticos
  • Calidad de los pastos, especialmente los niveles de proteína
  • Composición de las especies de pastizales
  • Altura del pasto y presencia de ramoneo o forbs
  • Manejo de pastizales
  • Calidad y cantidad general de la dieta
• Hábitos de pastoreo selectivo
• Variabilidad de la distribución del huevo dentro de la muestra fecal
• Patrones diurnos de puesta de huevos
• Tiempos de tránsito de alimentos
• Rendimiento fecal y consistencia
• Técnica de laboratorio
  • Recolección de muestras
  • Preparación de la muestra
  • Contar huevos

Dados todos estos factores, la precisión de los recuentos de huevos fecales mejora si toma más de una muestra, y necesita comparar números dentro del tiempo de muestreo (no compare entre estaciones o años) y dentro de grupos de animales (no compare entre edades o etapas de producción). Hay algunos indicios de que puede ahorrar esfuerzo y gastos y aún así obtener una buena indicación del mérito genético de un padre haciendo una muestra agrupada dentro de un grupo de medio hermanos.

Centrarse en la selección de toros resistentes puede ser el enfoque más rentable y útil para mejorar la parvada (Douch et al., 1996). La precisión de la evaluación del padre aumenta con el número de descendientes evaluados y el número de granjas donde se utiliza el padre, ya que esto disminuye la variabilidad causada por la presa y por el manejo. En un estudio realizado con corderos Katahdin donde se midieron los recuentos de huevos fecales a las 8 y 22 semanas, hubo efectos de toro “grandes y significativos” en ambos momentos, y estos toros mantuvieron su clasificación a través de años, rebaños y tiempos de medición. Esto enfatiza la importancia de seleccionar buenos carneros para mejorar la salud de su rebaño (Notter et al., 2007).

Los recuentos de huevos fecales proporcionan información más detallada para guiar a los productores en la selección de animales que no están arrojando tantos huevos de parásitos internos. Sin embargo, requiere mucha mano de obra y puede ser costoso. Existe un método alternativo para encontrar animales resistentes o resistentes, si Haemonchus contortus (gusano barberpole, un parásito chupador de sangre) es el parásito primario. El sistema FAMACHA se desarrolló en Sudáfrica como un medio para evaluar la anemia, un síntoma de infección del gusano barbero. Para usar este método, un productor capacitado simplemente examina la superficie interna del párpado inferior y compara el color de las membranas con los cinco tonos de rosa en la tarjeta FAMACHA. Una puntuación de 1 (rosa brillante) indica que no hay anemia, mientras que una puntuación de 5 (blanco) significa anemia grave e infección grave. Los productores pueden trazar las puntuaciones de la parvada o manada y registrar las puntuaciones de cada animal cada dos semanas durante la temporada de parásitos, y desparasitar solo a aquellos animales que están anémicos (puntuaciones de 4 y 5, o 3 si hay otras indicaciones, como una mala condición corporal). En áreas donde el gusano barberpole es el parásito principal, FAMACHA puede servir como una forma rápida y económica de seleccionar animales con menos problemas de parásitos. Sin embargo, algunos animales pueden tener una buena puntuación FAMACHA (rosa más brillante, un 1 o 2) y, sin embargo, estar arrojando algunos huevos en sus heces. Estos animales son resistentes en lugar de resistentes. Aún así, la investigación ha demostrado una buena correlación con la puntuación FAMACHA, el volumen de células empaquetadas (PCV, una medida de anemia) y los recuentos de huevos fecales donde H. contortus es el parásito principal en la población (Bisset et al., 2001; Kaplan y otros, 2004; Burke y otros, 2007; Burke y Miller, 2008).

¿Qué aprendes de la puntuación FAMACHA?

Si un animal dado tiene una puntuación FAMACHA de 1, se puede decir que el animal no está anémico. Pero no sabes por qué a menos que mires más datos; podría ser que el animal no haya sido desafiado por Haemonchus contortus. O podría ser que el animal haya sido desafiado, pero sea resistente. Finalmente, podría ser que el animal haya sido desafiado pero sea resistente.

Para decidir cuál es la verdad, hay que mirar al resto del rebaño: ¿alguno de ellos es anémico, o todos están puntuando bien con FAMACHA? Si todos están bien (no anémicos), entonces probablemente el desafío aún no es lo suficientemente alto como para causar una enfermedad. Sigue mirando. Y recuerde que muchos parásitos internos no causan anemia; Esté alerta a otros signos de enfermedad, como pérdida de peso, animales que se están quedando atrás o diarrea.

Si algunos son anémicos (lo que indica que Haemonchus está causando un problema) mientras que otros están bien, entonces has identificado algunos animales que manejan el desafío de Haemonchus. ¿Son resistentes o resistentes? Un recuento de huevos fecales puede ayudar a resolver eso; Los recuentos altos en un animal que no está anémico pueden indicar resiliencia. Los recuentos muy bajos apuntan a un animal resistente. Las observaciones repetidas son necesarias para tomar decisiones más precisas.

El punto es que una sola puntuación FAMACHA no dice realmente lo que está sucediendo en una granja o incluso en un animal en particular. Observar la condición de toda la parvada o manada, y hacer esto en el transcurso de toda la temporada, y usar recuentos de huevos fecales para obtener más información puede ayudar a un productor a comprender el estado de los parásitos internos que residen en la granja. Trazar los puntajes de FAMACHA y observar la tendencia es una gran ayuda para controlar la salud del rebaño o manada, y revisar a los animales en un horario regular eventualmente dará confianza en la capacidad de un animal en particular para mantenerse saludable. Pero una buena puntuación FAMACHA no es motivo de complacencia. Utilice el sistema, ya que está diseñado para una forma rápida y económica de diagnosticar a los animales que necesitan tratamiento y, lo que es más importante, para seleccionar los animales más resistentes o resistentes para la cría.

Otra forma de evaluar la salud de los animales (y al hacerlo, poder identificar animales más resistentes a los parásitos) se llama el Chequeo© de Cinco Puntos (ver Tabla 1). Este sistema se ha enseñado en Sudáfrica y es un recordatorio para mirar a todo el animal al decidir si los parásitos internos son o no un problema (Bath y van Wyk, 2009). Este enfoque ayuda a detectar la presencia de parásitos internos además de Haemonchus contortus. Muchos productores ya hacen una versión de esto.

Tabla 1. Verificación de© cinco puntos
Punto	Qué comprobar		Qué parásitos
1	Ojo	Palideo de las membranas oculares	Gusano de la barbero
		Puntuación FAMACHA©	Duela hepática
2	Atrás	Puntuación de la condición corporal	Todo
3	Trasero	Puntuación Dag	Gusano estomacal marrón
		Suciedad fecal	Gusano del pelo
		Evidencia de fregado	Lombriz
			Gusano nódulo
4	Mandíbula	Edema submandibular	Gusano de la barbero
		“Mandíbula de botella”	Duela hepática
5	Nariz	Secreción nasal	Bots nasales
Fuente: www.sheep101.info/201/parasite.html

Por supuesto, la puntuación de la condición corporal puede ser baja por otras razones, incluida la mala nutrición, el ordeño pesado, enfermedades como la de Johne o dientes deficientes. La secreción nasal también puede ocurrir por otras razones, y los bots nasales no son un problema en todas las regiones. Un punto adicional a hacer con respecto a la “puntuación dag” (suciedad fecal, debido al desgaste) es que hay evidencia de que algunos animales con resistencia a los parásitos internos tienen más diarrea (fregado). Se cree que su respuesta inmune incluye diarrea como una forma de eliminar parásitos internos. Por lo tanto, algunos animales que han sido tratados con desparasitantes debido a este síntoma son en realidad resistentes a los parásitos internos (Wolf et al., 2008). El fregado también puede ser el resultado de un pasto exuberante, o puede indicar coccidiosis. Es importante examinar todas las pruebas a la hora de evaluar la sanidad animal.

Otra pieza importante de evidencia es el vigor animal. Un animal que está letárgico o rezagado con respecto al rebaño es probable que tenga algún problema de salud, y los parásitos internos son a menudo los culpables. Es una buena idea examinar a esos animales de cerca y tratarlos según sea necesario.

Cómo utilizar esta información en la selección de animales en su rebaño

• Qué recursos tiene y cuánto tiempo y dinero puede gastar
  • Mínimo: siempre registre los tratamientos antihelmínticos y elimine a aquellas personas que necesitan más de tres tratamientos al año; No seleccione corderos carnero o cabritos de presas o toros que requieren tratamiento frecuente o de granjas que no mantienen registros.
  • Medio: como se mencionó anteriormente, pero también haga FAMACHA si Haemonchus contortus es un problema en su área, y mantenga esos registros. Peso récord de corderos y cabritos. Use un índice para tener en cuenta la edad de la presa, el tipo de nacimiento y los días de edad; Retenga a aquellos animales que pueden prosperar en su sistema y se desempeñan bien con menos intervención.
  • Más recursos y / o más motivación para mejorar rápidamente, como se mencionó anteriormente, pero también tomar muestras fecales y tener recuentos cuantitativos, y registrarlos. Si H. contortus está presente, use FAMACHA para monitorear la infección interna del parásito y tome muestras fecales durante un momento en que los animales son desafiados. Tomar otra muestra un mes después puede agregar confianza para las decisiones de reproducción. Una vez más, recuerde considerar la edad del animal y la etapa de producción y el número de descendientes de enfermería, o esto favorece los nacimientos solteros y las madres amamantando solteros o no lactantes.

A medida que su rebaño o manada mejora, puede seleccionar con mayor presión; sacrificar cualquier animal que necesite dos tratamientos al año, o uno, por ejemplo. A medida que disminuye la contaminación en la granja, sus animales deberían tener cada vez menos problemas con los parásitos y tener una mejor producción.

Estímulo

Puede parecer que la selección de resistencia a los parásitos internos implica mucho trabajo extra. Los investigadores admiten que tomará mucho tiempo hacer un progreso significativo para que una bandada esté relativamente libre de enfermedad clínica incluso bajo desafío. Los parásitos internos tienen muchas ventajas en este juego, incluida la capacidad de esperar el momento adecuado para volver a activarse e infectar a los animales o reproducirse y poner huevos activamente para que los huevos se depositen durante una época favorable del año. Los parásitos son prolíficos y pueden causar enormes problemas al huésped en un período de tiempo relativamente corto.

Pero la investigación ha demostrado que se puede lograr un progreso significativo y que la salud y la producción de ovejas y cabras mejorarán como resultado. Existen estrategias para identificar toros con resistencia superior y pueden marcar una gran diferencia en un rebaño o manada cuando se emplean. Seleccionar la resistencia teniendo en cuenta también los rasgos de producción puede ahorrarle a un productor mucho dinero y angustia, ya que los propios animales ayudan a combatir los parásitos internos y se mantienen más saludables. La contaminación de los pastos se reduce cuando hay animales resistentes.

Dentro de diez años, las ovejas y las cabras podrían ser mucho más resistentes si los productores dedicaran tiempo y esfuerzo a identificar y seleccionar los toros que son más resistentes. El próximo año, su propio rebaño podría ser más resistente de lo que es ahora. Cada criador que se esfuerza en seleccionar este rasgo beneficiará al negocio. Los productores orgánicos se beneficiarán de tener existencias resistentes, pero también lo harán los productores no orgánicos porque los antihelmínticos no siempre son efectivos y los parásitos han desarrollado resistencia a muchos de los medicamentos existentes.

Como se mencionó anteriormente, algunos criadores están aprovechando los servicios del Programa Nacional de Mejoramiento de Ovejas (NSIP) para establecer valores de reproducción estimados (EBV) para la resistencia de parásitos. Esto se ha hecho en Australia con grandes resultados. El NSIP ahora se está asociando con genetistas australianos para fortalecer la capacidad de los criadores estadounidenses y australianos para realizar mejoras. Consulte http://nsip.org para obtener más información. Los productores que apoyan a los criadores que utilizan EBV para la resistencia interna de los parásitos votarán con sus dólares por un sistema más sostenible. Se necesita un esfuerzo concertado entre los criadores dentro de una raza en particular para desarrollar una genética resistente.

Resumen

La selección de animales con la capacidad de combatir los parásitos internos (y otras enfermedades) es la mejor estrategia a largo plazo para controlar los problemas internos de los parásitos. Hay una variedad de métodos accesibles para el productor para ayudar con este aspecto de la selección de animales. La selección de animales es una herramienta vital para mejorar los rebaños de ovejas y cabras.

Aún así, la selección de animales no es la única herramienta que necesitará un productor. Para tener una empresa rentable y productiva, un productor querrá usar todas las herramientas, especialmente el manejo de pastos, porque ninguna de las otras herramientas será efectiva sin un buen manejo de pastos. Usar tantas herramientas como sea posible y prestar atención (y gastar tiempo y dinero) en identificar y seleccionar aquellos animales que pueden resistir los parásitos internos y / o ser resistentes a los efectos de los parásitos internos pagará dividendos en los próximos años. La selección de animales es un componente vital de una estrategia holística de manejo de parásitos.

Gestión interna de parásitos
Sí	No
		1. ¿Los parásitos se mantienen en un nivel que no afecta el rendimiento animal?
		¿Cómo lo sabes?
		¿Cómo monitorea la carga de parásitos en sus animales?
		2. ¿Qué prácticas utilizas para reducir los problemas de parásitos y evitar el uso de antihelmínticos?
		Sacrificar a los animales que más se desparasitan
		Use pastos más limpios (pastos de descanso, cortar para heno, pastar ganado)
		Pastar diversos pastos
		Reducir la tasa de almacenamiento
		Evite pastos de pastoreo de menos de 3 pulgadas
		Utilizar ramoneo y/o forrajes con alto contenido de taninos condensados
		Pastar ganado vacuno o equino con cabras u ovejas
		Clases separadas de animales sensibles
		Criar razas e individuos con resistencia a los parásitos.
		Seleccione carneros o pavos con resistencia a los parásitos
		3. ¿Qué programa de control de parásitos utiliza para reducir el uso de antihelmínticos y controlar las cargas de parásitos? Consulte www.scsrpc.org para obtener información sobre estas técnicas.
		Observación visual para detectar animales con problemas de parásitos
		Utilice FAMACHA (ver www.scsrpc.org)
		Verificar el recuento de huevos fecales antes y después del tratamiento para controlar las cargas y verificar la efectividad de los antihelmínticos
		Cambiar la clase de antihelmíntico una vez que se nota resistencia
		Desparasitación estratégica justo antes de bromear o parir
		Desparasitar a todos los animales nuevos (y verificar el recuento de huevos fecales de siete a 10 días después para asegurarse de que no haya huevos en las heces)
		Utilice Smart Drenching (consulte www.scsrpc.org)
		Desparasitar solo aquellos animales que lo necesiten
		Sacrificar animales que necesitan desparasitación frecuente (más de tres tratamientos por temporada para adultos; menos a medida que su rebaño o manada se fortalece)
		Otros: Lista aquí:
Fuente: Hoja de verificación de sostenibilidad de pequeños rumiantes, ATTRA

Referencias

Amarante, A.F.T., y M.R.V. Amarante. 2003. Cría de ovejas para resistencia a infecciones por nematodos. Journal of Animal and Veterinary Advances 2. Volumen 3, p. 147–161.

Bath, G.F., y J. A. van Wyk. 2009. El Five Point Check© para el tratamiento selectivo específico de parásitos internos en pequeños rumiantes. Investigación de pequeños rumiantes. Volumen 86, Número 1. págs. 6–13.

Bisset, S.A. y C.A. Morris. 1996. Viabilidad e implicaciones de la cría de ovejas para la resiliencia al desafío de los nematodos. Revista Internacional de Parasitología. Vol. 26. págs. 857 y 868.

Bisset, S.A., J.A. Van Wyk, G.F. Bath, C.A. Morris, M.O. Senson y F.S. Malan. 2001. Relaciones fenotípicas y genéticas entre la puntuación FAMACHA, el recuento de huevos fecales y los datos de rendimiento en ovejas merinas expuestas a la infección por Haemonchus contortus en Sudáfrica. Actas del 5º Congreso Internacional de Veterinaria de Ovejas. , Ciudad del Cabo, Sudáfrica.

Burke, J.M., y J.E. Miller. 2002. Resistencia relativa de las ovejas cruzadas Dorper a la infección por nematodos gastrointestinales en comparación con las ovejas St. Croix y Katahdin en el sureste de los Estados Unidos. Parasitología Veterinaria. Vol. 109, números 3-4. págs. 265 y 275.

Burke, J.M. y J.E. Miller. 2004. Resistencia relativa a los parásitos nematodos gastrointestinales en corderos Dorper, Katahdin y St. Croix en condiciones encontradas en la región sureste de los Estados Unidos. Investigación de pequeños rumiantes. Vol. 54, números 1 y 2. págs. 43 a 51.

Burke, J.M., Miller, J.E., Olcott, D.D., Olcott, B.M. y Terrill, T.H. 2004. Efecto de la dosis de partículas de alambre de óxido de cobre y el nivel de suplemento alimenticio sobre la infección por Haemonchus contortus en corderos. Parasitología Veterinaria. Vol. 123. págs. 235–243.

Burke, J.M. y J.E. Miller. 2008. Uso del sistema FAMACHA para evaluar la resistencia/resiliencia de los nematodos gastrointestinales en crías de sementales. Parasitología Veterinaria. Vol. 153. págs. 85 a 92.

Douch, P.G.C., R.S. Green, C.A. Morris, J.C. McEwan y R.G. Windon. 1996. Marcadores fenotípicos para la selección de ovejas resistentes a nematodos. Revista Internacional de Parasitología. Vol. 26, números 8-9. págs. 899 a 911.

Eady, S.J., R.R. Woolaston, y I.A. Barger. 2003. Comparación de estrategias genéticas y no genéticas para el control de nematodos gastrointestinales de ovinos. Ciencia de la Producción Ganadera. Vol. 81, Número 1. págs. 11-23.

Gauly, M. y G. Erhardt. 2001. Resistencia genética a los parásitos nematodos gastrointestinales en ovejas Rhön después de una infección natural. Parasitología Veterinaria. Vol. 102, Número 3. págs. 253 a 259.

Gray, G.D. 1997. El uso de ovejas genéticamente resistentes para controlar el parasitismo de nematodos. Parasitología Veterinaria. Vol. 72, números 3 y 4. págs. 345 a 366.

Green, R.S, C.A. Morris, P.G.C. Douch, M. Wheeler, C.J. West y S.M. Hickey. 1999. Medias y heredabilidades de las concentraciones de anticuerpos contra Trichostrongylus colubriformis y otros parásitos nematodos en corderos de tres a diecisiete meses de edad. Ciencia de la Producción Ganadera. Vol. 58, Número 2. págs. 129 y 135.

Gruner, L., J. Bouix, J.C. Brunel. 2004. Alta correlación genética entre la resistencia a Haemonchus contortus y a Trichostrongylus colubriformis en ovejas INRA 401. Parasitología Veterinaria. Vol. 119, Número 1. págs. 51 a 58.

Hoste, H. y C. Chartier. 1993. Comparación de los efectos sobre la producción de leche de la infección concurrente con Haemonchus contortus y Trichostrongylus colubriformis en cabras lecheras de alta y baja producción. Revista Americana de Investigación Veterinaria. Vol. 54, No. 11. Págs. 1888-1893.

Hoste, H. y C. Chartier. 1998. Respuesta a la infección de desafío con Haemonchus contortus y Trichostrongylus colubriformis en cabras lecheras. Consecuencias sobre la producción de leche. Parasitología Veterinaria. Vol. 74, Número 1. págs. 43-54.

Kahn, L.P., M.R. Knox, S.W. Walkden-Brown y J.M. Lea. 2003. Regulación de la resistencia a los parásitos nematodos de ovejas merinas mono y gemelas a través de la nutrición y la selección genética. Parasitología Veterinaria. Vol. 114, Número 1. págs. 15-31.

Kaplan, R.M., J.M. Burke, T.H. Terrill, J.E. Miller, W.R. Getz, S. Mobini, E. Valencia, M.J. Williamson, M. Larsen y A.F. Vatta. 2004. Validación de la carta de colores de ojos FAMACHA para la detección de anemia clínica en ovejas y cabras en granjas del sur de Estados Unidos. Parasitología Veterinaria. Vol. 123, números 1 y 2. págs. 105 a 120.

Kemper, K.E., R.L. Elwin, S.C. Bishop, M.E. Goddard y R.R. Woolaston. 2009. Haemonchus contortus y Trichostrongylus colubriformis no se adaptaron a la exposición a largo plazo a ovejas que eran genéticamente resistentes o susceptibles a infecciones por nematodos. Revista Internacional de Parasitología. Vol. 39, Número 5. págs. 607 a 614.

Miller, J.E., S.C. Bishop, N.E. Cockett y R.A. McGraw. 2006. Segregación de la infección natural y experimental por nematodos gastrointestinales en la progenie F2 de ovejas nativas susceptibles de Suffolk y resistentes de la Costa del Golfo y su utilidad en la evaluación de la variación genética. Parasitología Veterinaria. Vol. 140, números 1 y 2. págs. 83 a 89.

Notter, David, J. Morgan y B. Vanimisetti. 2007. Herramientas para la mejora genética de la resistencia a los parásitos: desarrollo de un recuento fecal de huevos EPD. Cuaderno NSIP Katahdin.

Saddiqi, Hafiz, H.A. Abubaker, Z. Iqbal, M.N. Khan y G. Muhammad. 2010. Resistencia comparativa de razas ovinas a Haemonchus contortus en una infección natural de pastos. Revista Internacional de Agricultura y Biología. Vol. 12, No. 5. págs. 739 y 743.

Sréter, T., T. Kassa,i y E. Takács. 1994. Heredabilidad y especificidad de la capacidad de respuesta a la infección por Haemonchus contortus en ovinos. Revista Internacional de Parasitología. Vol. 24, Número 6. págs. 871 a 876.

Torres-Acosta, J.F.J. y H. Hoste. 2008. Métodos alternativos o mejorados para limitar el parasitismo gastrointestinal en el pastoreo de ovejas y cabras. Investigación de pequeños rumiantes. Vol. 77, números 2 y 3. págs. 159 a 173.

Vagenas, D., F. Jackson, A.J.F. Russel, M. Merchant, I.A. Wright y S.C. Bishop, 2002. Control genético de la resistencia a parásitos gastrointestinales en cabras productoras de cachemira cruzada: respuestas a la selección, parámetros genéticos y relaciones con rasgos de producción. Ciencia Animal. Vol. 74. págs. 199 a 208.

Vanimisetti, H.B., S.P. Greiner, A.M. Zajac, y D.R. Notter. 2004. Rendimiento de las razas compuestas de ovejas de pelo; resistencia de los corderos a Haemonchus contortus. Revista de Ciencia Animal. Vol. 82, No. 2. págs. 595 a 604.

Woolaston, R.R. 1992. Selección de ovejas merinas para aumentar y disminuir la resistencia a Haemonchus contortus: efectos periparto sobre el recuento de huevos fecales. Revista Internacional de Parasitología. Vol. 22, No. 7. págs. 947 a 953.

Wolf, B.T., K. Howells, C. Nakiclny, W. Haresign, R.M. Lewis, Ol. Davies y M.H. Davies. 2008. Parámetros genéticos para el recuento de huevos de heces de estrongyle y Nematodirus en corderos y sus relaciones con rasgos de rendimiento. Ciencia Pecuaria. Vol. 113, números 2 y 3. págs. 209 a 217.

Más recursos

Investigación y Educación en Agricultura Sostenible (SARE)
El sitio web de SARE contiene muchos informes de investigación de interés para los productores de ovejas y cabras. Para acceder a estos informes, vaya a la página de inicio, haga clic en “informes de proyectos” y luego busque “parásito interno” para obtener una lista de informes que pueden ser informativos sobre este tema. Hay una presentación de PowerPoint sobre el tema de la selección de animales para la resistencia interna del parásito que es muy informativa e interesante. La presentación ilustra muchos conceptos importantes de la selección de animales para la resistencia interna del parásito. Véase también el informe sobre ese proyecto SARE para agricultores/ganaderos, FNC05-583.

Consorcio Americano para el Control de Parásitos de Pequeños Rumiantes (ACSRPC)
ACSRPC se conocía anteriormente como el Consorcio del Sur para el Control de Parásitos de Pequeños Rumiantes (SCSRPC) y proporciona investigación científica actualizada y recomendaciones para los productores. Hay una serie de seis partes de artículos escritos para productores y publicados previamente en Goat World, así como otros artículos, incluyendo información sobre FAMACHA y Smart Drenching.

En este artículo se recopila un resumen del trabajo financiado por SARE realizado por el SCSRPC.

Universidad de Langston
El sitio web de la Universidad de Langston incluye dos tutoriales para hacer conteos de huevos fecales. La información es ligeramente diferente en estas presentaciones. Consulte también el capítulo del manual de capacitación basado en la web para obtener información más completa sobre el control de parásitos internos y externos.

Página de pequeños rumiantes de Maryland
Susan Schoenian es educadora del Servicio de Extensión Cooperativa de la Universidad de Maryland. Ella ha compartido generosamente información con el mundo a través de este sitio web. También ha publicado algunas presentaciones excelentes en Slideshare, incluidas algunas sobre el manejo integrado de parásitos. Estas presentaciones son muy útiles y contribuirán a la comprensión del problema y las soluciones. Acceda a ellos desde el sitio web principal.

Herramientas para el manejo de parásitos internos en pequeños rumiantes: selección de animales
Por Linda Coffey, Especialista en Agricultura de NCAT
Publicado 2012
©NCAT
IP400
Ranura 394
Versión 051612

Esta publicación es producida por el Centro Nacional de Tecnología Apropiada a través del programa de Agricultura Sostenible de ATTRA, en virtud de un acuerdo de cooperación con el Desarrollo Rural del USDA. Esta publicación también fue posible en parte gracias a la financiación deEL USDA, NIFA, OREI (Premio No. 2010-51300-21641); y la Investigación sobre Agricultura Sostenible de la Región Sur. ATTRA.NCAT.ORG.